3000轉染試劑是目前分子生物學和細胞生物學研究中廣泛使用的高效、低毒陽離子脂質體轉染試劑。它專為將外源核酸（如質粒DNA、siRNA、miRNA或CRISPR-Cas9組件）高效導入哺乳動物細胞而設計，適用于多種貼壁和部分懸浮細胞系，包括難轉染的原代細胞和干細胞。

　　其核心優勢在于其雙組分系統：除主轉染試劑Lipofectamine™3000外，還包含P3000™增強劑。P3000™可與DNA預先混合，優化核酸復合物的形成，顯著提升轉染效率和蛋白表達水平。該系統通過陽離子脂質體與帶負電的核酸結合，形成穩定的脂質-核酸復合物，通過內吞作用進入細胞，并在胞內釋放核酸，實現高效基因遞送。

　　3000轉染試劑是細胞轉染實驗中的關鍵試劑，其活性受保存條件影響顯著。為確保轉染效率和實驗重復性，需嚴格遵循以下保存方法：

　　1、溫度控制

　　短期保存（1-4周）：

　　推薦溫度：2-8℃（冰箱冷藏室）。

　　操作：未開封的試劑可直接存放于冷藏室；開封后需立即分裝（避免反復凍融），分裝后的試劑仍需冷藏保存。

　　注意：冷藏保存時需遠離冰箱內壁（防止結冰），且避免與揮發性或腐蝕性物質共存。

　　長期保存（超過1個月）：

　　推薦溫度：-20℃或更低（冷凍室）。

　　操作：未開封的試劑可長期冷凍保存；開封后需按實驗用量分裝至無菌離心管中，密封后冷凍。

　　注意：冷凍保存的試劑使用前需完q解凍（室溫或4℃緩慢解凍），解凍后需充分混勻（輕柔顛倒或渦旋，避免產生氣泡）。

　　2、分裝與避光

　　分裝原則：

　　根據實驗頻率分裝成小體積（如50-100μL/管），減少反復解凍次數（每次凍融會降低活性約10%-20%）。

　　分裝時使用無菌、無RNA酶的離心管，避免污染。

　　避光保存：

　　轉染試劑對光敏感，需用鋁箔包裹分裝管或存放于棕色試劑瓶中，避免直接光照。

　　實驗操作時也需在避光條件下進行（如使用遮光罩或弱光環境）。

　　3、避免反復凍融

　　凍融危害：

　　反復凍融會導致轉染試劑中的脂質體或聚合物結構破壞，降低轉染效率。

　　實驗表明，凍融3次以上的試劑轉染效率可能下降50%以上。

　　解決方案：

　　嚴格按實驗用量分裝，確保每次使用一管新解凍的試劑。

　　若需多次使用同一管試劑，可解凍后分裝成更小體積（如10μL/管），按需取用。

　　4、特殊成分的保存

　　含增強劑（Enhancer）的試劑：

　　某些3000轉染試劑配套增強劑（如P3000™Reagent），需與主試劑分開保存。

　　增強劑通常需冷藏保存（2-8℃），避免冷凍（可能影響其促進DNA/RNA復合物形成的能力）。

　　含血清或培養基的試劑：

　　若試劑中已添加血清或培養基成分，需嚴格按說明書保存（通常為冷藏或冷凍）。

　　自行配制的轉染復合物（如DNA+試劑+Opti-MEM）需現用現配，不可長期保存。

　　5、運輸與穩定性

　　運輸條件：

　　試劑運輸時需使用干冰或冰袋維持低溫（2-8℃或-20℃），避免高溫導致變性。

　　收到試劑后需立即檢查包裝完整性，若發現解凍或泄漏需聯系供應商更換。

　　穩定性測試：

　　長期保存的試劑建議定期進行穩定性測試（如用已知轉染效率的質粒驗證活性）。

　　若轉染效率顯著下降（如低于初始值的70%），需更換新試劑。

　　6、常見問題與解決

　　問題1：試劑出現沉淀或渾濁。

　　原因：低溫保存導致脂質體聚集或結晶。

　　解決：4℃緩慢解凍后輕柔混勻（勿渦旋劇烈），若沉淀無法溶解需丟棄。

　　問題2：轉染效率波動大。

　　原因：保存條件不一致（如反復凍融、溫度波動）。

　　解決：嚴格分裝并記錄凍融次數，優先使用凍融次數少的試劑。

　　問題3：試劑變色（如發黃）。

　　原因：氧化或污染。

　　解決：立即丟棄，避免使用變色試劑。

　　總結建議

　　未開封試劑：按說明書推薦溫度保存（通常為-20℃或2-8℃）。

　　開封后試劑：分裝后冷藏（2-8℃）保存，若長期不用則冷凍（-20℃）。

　　關鍵原則：避光、分裝、避免反復凍融、定期驗證活性。